Abstract:
L’antibiogramme est une technique de routine d’analyse médicale dont le but est d’aider le
médecin traitant à prescrire au patient l’antibiotique le plus approprié. Le principe de cette
technique consiste à placer la culture de bactéries en cause de l’infection en présence des
antibiotiques, normalement efficaces, et à observer les conséquences sur le développement et
la survie de celle-ci en mesurant le diamètre des zones translucides autour des disques
d’antibiotiques (zones d’inhibition). Afin de garantir des résultats fiables et reproductibles,
cette technique est standardisée. Cependant, dans des situations particulières le technicien de
laboratoire doit modifier un ou plusieurs paramètres de la technique pour palier à cette
situation.
Dans notre, étude nous avons évalué l’impact de changements de la concentration d’agar-
agar et le temps d’incubation sur le diamètre de la zone d’inhibition et voir si cela pouvait
affecter ou non l'interprétation de l’antibiogramme en se référant aux valeurs critiques décrites
par un des organismes régulateurs. Nous avons réalisé des antibiogrammes sur Pseudomonas
aeruginosa "ATCC 27853" et Staphylococcus aureus "ATCC 25923" en utilisant des milieux
de culture Mueller-Hinton 14, 15,16, 17, 18, 19 et 20 g/L d’agar-agar et en mesurant les zones
d’inhibition chaque 24 h pendant 4 jours. Après analyses statistiques nous avons observé que,
malgré l’absence d’influence sur le résultat de l’interprétation des antibiogrammes, la variation
des diamètres d’inhibition, dans tous les cas, était significative sauf entre les milieux agar-agar
17 et 16 g/L en agar-agar pour S. aureus auxquels sont ajoutés les milieux 15 et 14 g/L pour P.
aeruginosa.
